Распрацоўка надзейных і стандартызаваных метадаў тэставання ўспрымальнасці камароў-рояў да інсектыцыдаў мае вырашальнае значэнне для разумення эфектыўнасці новых актыўных інгрэдыентаў або прэпаратаў. Метады тэставання ўспрымальнасці камароў-рояў да кантактных інсектыцыдаў або прадуктаў (напрыклад, тых, што прасоўваюцца ў праграмах аховы здароўя) добра распрацаваны і стандартызаваны. Аднак метады тэставання лятучых або аэразольных інсектыцыдаў, якія выкарыстоўваюцца ў бытавых прадуктах, цяжка эфектыўна ўкараніць. Зыходзячы з рэкамендацый Сусветнай арганізацыі аховы здароўя па бытавых інсектыцыдах, мы распрацавалі стандартызаваны і высокапрадукцыйны метад тэставання аэразольных прадуктаў з выкарыстаннем камароў у клетках і эфектыўны метад дэзінфекцыі, які праводзіцца ў выпрабавальнай камеры Піта-Грэйдзі (выпрабавальная камера PG). Мы пацвердзілі эфектыўнасць гэтага новага метаду, выкарыстоўваючы папуляцыі ўстойлівых да інсектыцыдаў і ўспрымальных камароў Aedes і Anopheles. Новай асаблівасцю гэтага метаду з'яўляецца наяўнасць камеры, накіраванай на камарскія клеткі, што дазваляе ў рэжыме рэальнага часу колькасна ацэньваць узровень гібелі камароў пасля ўздзеяння інсектыцыду. Дэзінфекцыя тампонамі эфектыўна выдаляе рэшткі аэразольнага алею, які змяшчае пірэтроіды, з паверхні выпрабавальнай камеры, прычым узровень смяротнасці для ўспрымальных камароў, пратэставаных непасрэдна на паверхні камеры, складае менш за 2%. Прасторавай неаднароднасці ў паказчыках гібелі або смяротнасці сярод камароў у клетках у камеры PG не назіралася. Наш метад з падвойнай клеткай забяспечвае ў восем разоў большую прапускную здольнасць, чым метад свабоднага палёту, што дазваляе адначасова тэставаць розныя штамы камароў і эфектыўна адрозніваць успрымальныя і ўстойлівыя папуляцыі камароў, якія тэстуюцца паралельна.
Да сённяшняга дня аэразольныя інсектыцыды ў асноўным выкарыстоўваліся ў хатніх умовах для асабістай абароны і абмежавана ўжываліся ў праграмах аховы здароўя. Аднак нядаўнія даследаванні паказалі шырокае распаўсюджванне бытавых інсектыцыдаў у раёнах, дзе распаўсюджаныя трансмісіўныя хваробы. Незалежна ад таго, ці з'яўляецца матывацыяй барацьба з камарамі, ці прафілактыка хвароб, існуе вострая патрэба ў стандартызаваных і простых у выкарыстанні метадах скрынінга эндэмічных папуляцый камароў на ўспрымальнасць да бытавых інсектыцыдаў. Гэта мае вырашальнае значэнне для прагназавання эфектыўнасці інсектыцыдаў супраць мясцовых пераносчыкаў і разумення таго, як выкарыстанне бытавых інсектыцыдаў уплывае на эвалюцыйны адбор устойлівасці да інсектыцыдаў.
Дадатковы метад 1 змяшчае падрабязныя пакрокавыя інструкцыі па правядзенні нашай праграмы тэсціравання аэразольных інсектыцыдаў.
Нягледзячы на тое, што рэкамендацыі СААЗ рэкамендуюць выкарыстанне аўтаматычных небулайзераў, яны не ўтрымліваюць канкрэтных тэхнічных характарыстык. Выкарыстанне аўтаматычных небулайзераў мае вырашальнае значэнне, бо ручное распыленне ў прапіленглікольнай камеры не толькі працаёмкае, але і можа выклікаць прасторавыя неадпаведнасці і варыяцыі працягласці распылення.
Рэакцыйную камеру неабходна стэрылізаваць пасля кожнага тэсту, але метад унутранай ачысткі, рэкамендаваны ў рэкамендацыях СААЗ, прадугледжвае падачу вады са шланга. У нашай паўсядзённай працы гэты метад з'яўляецца найбольш працаёмкім этапам эксплуатацыі біяаналітычнага абсталявання, таму мы распрацавалі і пратэставалі працэдуру стэрылізацыі на аснове тампонаў.
Здымныя часткі вентылятара апрацоўваюцца, як апісана вышэй, а лопасці і рама вентылятара чысцяцца губкай, змочанай у 5% растворы Decon 90.
Зыходзячы з залежнасці паміж працягласцю распылення і хуткасцю падачы прадукту, наш аэразольны распыляльнік таксама прадэманстраваў добрую дакладнасць у кантролі суадносін дазоўкі аэразолю, прынамсі, у правераным дыяпазоне ад 1 да 4 разоў. Як паказана на мал. 3b, гэтая характарыстыка асабліва важная для характарыстыкі залежнасці доза-рэакцыя новых аэразольных прэпаратаў або вызначэння ідэнтыфікацыйнай дозы для выяўлення ўстойлівасці да інсектыцыдаў.
Мы паказваем, што наш перагледжаны пратакол ацэнкі бытавых аэразольных інсектыцыдаў з выкарыстаннем дэзінфекцыі тампонамі, падвойных клетак, дыстанцыйна кіраваных распыляльнікаў і біяметрычнага запісу з дапамогай экшн-камер з'яўляецца больш эфектыўнай і рэальнай альтэрнатывай існуючым.Сусветная арганізацыя па ахове здароўярэкамендацыі. Метад дэзінфекцыі тампонамі, які патрабуе ўсяго 20 хвілін, значна эканоміць час у параўнанні з існуючым пратаколам (які звычайна патрабуе адну гадзіну на выпрабавальную камеру). Ён таксама скарачае час, які аператары трацяць на апрананне поўнага сродку індывідуальнай абароны (напрыклад, рэспіраторных шлемаў і антыстатычнай рабочай адзення). Акрамя таго, гэты метад стварае менш забруджанай вадкасці і адзення для апрацоўкі, чым поўная ачыстка выпрабавальнай камеры, тым самым мінімізуючы патэнцыял забруджвання памяшкання, у якім знаходзіцца выпрабавальная камера. Метад дэзінфекцыі тампонамі таксама падыходзіць для дэзінфекцыі паўпастаянных выпрабавальных памяшканняў, якія патрабуюцьмінімальныразмяшчэнне мэблі ў пакоях рознай планіроўкі.
Ключавым пытаннем, якое разглядалася ў гэтым і іншых даследаваннях, з'яўляецца стандартызацыя доз экспазіцыі інсектыцыдаў, якія ўжываюцца ў навакольным асяроддзі ў розных пратаколах выпрабаванняў. Як паказана на малюнку 2b, нягледзячы на фіксаваную працягласць распылення, аб'ём распылення адрозніваўся ў залежнасці ад тыпу аэразольных балончыкаў, што патэнцыйна адлюстроўвае адрозненні ў вытворчых працэсах (напрыклад, унутраны ціск, выкарыстанне паліва, структура фарсункі і г.д.). Акрамя таго, адсутнасць у цяперашні час камерцыйна даступных прылад дыстанцыйнага распылення з неабходнай гнуткасцю ў працягласці распылення абмяжоўвае іх выкарыстанне пры ацэнцы залежнасці доза-рэакцыя для барацьбы з камарамі. Ручное распыленне праз выпрабавальныя люкі або люкі доступу (пры наяўнасці) можа прывесці да варыяцый доз экспазіцыі. Фактычна, нашы вынікі падкрэсліваюць неабходнасць і важнасць скарачэння гэтых крыніц варыяцый. Для ўстойлівых папуляцый Aedes aegypti мы назіралі карэляцыю паміж дозай аэразолю і канчатковым вызначэннем успрымальнасці або рэзістэнтнасці (малюнак 3b). У ідэале, дозы аэразолю павінны быць стандартызаваны ў грамах аэразольнага рэчыва, а не па працягласці аэразолізацыі, каб палегчыць параўнанне паміж рознымі даследаваннямі.
RCAD прапануе альтэрнатыўны падыход для будучых даследаванняў, які мінімізуе ўплыў варыяцый працэсу. Нягледзячы на тое, што мы выявілі, што стандартызацыя аэразольных распыляльнікаў немагчымая, мы паказалі, што масу аэразолю, які паступае праз розныя аэразольныя балончыкі, можна адэкватна ацаніць шляхам каліброўкі даўжыні распылення (малюнкі 2b, 3a). Такая стандартызацыя канцэнтрацыі аэразолю ў любой выпрабавальнай камеры мае вырашальнае значэнне для паляпшэння адэкватнасці вынікаў.
Зыходзячы з нашага досведу і досведу іншых даследчых груп, рэкамендацыі, якія змяшчаюцца ў бягучым Кіраўніцтве адносна выкарыстання метадаў выяўлення аэразоляў для тэставання свабодна лятаючых камароў, ствараюць значныя лагістычныя праблемы для лабараторных і паўпалявых даследаванняў. Напрыклад, метады выяўлення свабодна лятаючых камароў маюць вельмі нізкую прапускную здольнасць (у тым ліку працаёмкі паўторны адлоў выжылых свабодна лятаючых камароў) і пакутуюць ад шэрагу тэхнічных абмежаванняў, такіх як цяжкасці з вызначэннем узроўню гібелі ў рэжыме рэальнага часу.
Нягледзячы на тое, што наш правераны эксперымент з падвойнымі клеткамі вырашае праблему абмежаванняў патоку і з'яўляецца магчымым метадам скрынінга ўспрымальнасці камароў да аэразольных інсектыцыдаў, варта адзначыць, што смяротнасць камароў Кайманавых астравоў была значна ніжэйшай у эксперыменце з клеткай, чым у эксперыменце са свабодным палётам (мал. 5c, табліца 1). Гэта адрозненне можа адлюстроўваць зніжэнне дозы інсектыцыду ўнутры клеткі, паколькі менш кропель аэразолю пранікае праз сетку і трапляе ў клетку. У будучых даследаваннях можна выкарыстоўваць тканіны з больш буйнымі ячэйкамі і канструкцыі клетак з больш высокай хуткасцю патоку паветра вентылятара (напрыклад, цыліндрычныя канструкцыі) для далейшай праверкі вынікаў, атрыманых з дапамогай розных эксперыментальных метадаў.
Час публікацыі: 02 лютага 2026 г.